ドロップレットオイル 008-FluoroSurfactant

フッ素系界面活性剤 008-Fluorosurfactant

マイクロドロップレット作製

008-FluoroSurfactantは、ハーバード大学David Weitz教授のグループによって開発され、RAN Biotechnologies社が製造するドロップレット生成試薬です。
様々なエマルジョン・ドロップレット作製時においてエマルジョン及びその内容物を安定的に保持し、PCRサーマルサイクリング温度や長期間にわたる保存などの厳しい条件や生物実験系にも対応しているため、論文掲載実績も多数あります。
HFE-7500等に溶解された物と任意濃度に調製用の原液バイアルパックが販売されています。

008-FluoroSurfactant等に関し、企業様向けOEM・プライベートブランド製品も承りますので、NTサイエンスまでお問い合わせください。

 
商品一覧(2025/2/1現在)
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※価格情報は、全て参考値であって定価制がありません。商流や購入時期等によって変化しますのでご購入の際は都度お見積依頼ください。
※2社以上が仲介される場合はマージン(仲介手数料)が上乗せされユーザー価格が値上がりします。
※別途送料1,600円(税抜)/箱を頂いております。(※北海道、沖縄は、別料金、離島、一部地域は配送不可となります。)
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商品コード品名溶媒標準価格(税抜)
WEB価格(税抜)
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通常納期
RT008-2%10ML2%(w/w) 008-FluoroSurfactant
008-FluoroSurfactant-2wtH-10ML
HFE750010ml¥59,800
¥56,800
通常在庫
~1週間程
RT008-2%502%(w/w) 008-FluoroSurfactant
008-FluoroSurfactant-2wtH-50G
HFE750050g¥152,000
¥144,200
通常在庫
~1週間程
RT008-2%5002%(w/w) 008-FluoroSurfactant
008-FluoroSurfactant-2wtH-500G
HFE7500500gお問い合わせ
受注生産
~3~4週間
RT008-5%205%(w/w) 008-FluoroSurfactant
008-FluoroSurfactant-5wtH-20G
HFE750020g¥153,000
¥145,000
通常在庫
~1週間程
RT008-5%505%(w/w) 008-FluoroSurfactant
008-FluoroSurfactant-5wtH-50G
HFE750050gお問い合わせ
受注生産
~3~4週間
RT008-5%2005%(w/w) 008-FluoroSurfactant
008-FluoroSurfactant-5wtH-200G
HFE7500200gお問い合わせ
受注生産
~3~4週間
RT008-N1GNeat 008-FluoroSurfactant
(un-dissolved)
008-FluoroSurfactant-1G
無溶媒1g¥176,000
¥166,500
受注生産
~3~4週間
RT008-N5GNeat 008-FluoroSurfactant
(un-dissolved)
008-FluoroSurfactant-5G
無溶媒5gお問い合わせ
受注生産
~3~4週間
RT008-N10GNeat 008-FluoroSurfactant
(un-dissolved)
008-FluoroSurfactant-10G
無溶媒10gお問い合わせ受注生産
~3~4週間
各種008-FluoroSurfactant等各種各種お問い合わせお問い合わせ
企業様向けOEM用008-FluoroSurfactant等
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SFPF1-2%50MLPico-Surf™ (2% (w/w) in Novec™ 7500)HFE750050mlお問い合わせお問い合わせ
SFPF1-5%50MLPico-Surf™ (5% (w/w) in Novec™ 7500)HFE750050mlお問い合わせお問い合わせ
DMACC-ZT3MILTYドロップレット破壊器具
ZEROSTAT 3 Milty

perfluorooctanol(PFO)の代用
1お問い合わせお問い合わせ

※008-FluoroSurfactantは、RAN Biotechnologies社製です。
※Pico-Surf ™は、Sphere Fluidics社の商標です。
※Novec ™は、3M社の商標です。

 
008-FluoroSurfactantQ&A
Q:ヒートサイクルにかけたら一部のドロップレット(エマルジョン、液滴)が融合や壊れたりしますが、どうしたらいいですか?
A:ドロップレット安定剤である界面活性剤濃度が高いもの(通常2%⇒5%)をご利用ください。

Q:ドロップレット(エマルジョン、液滴)がうまくできませんが、どうしたらいいですか?
A:ドロップレットの生成を成功させるには、マイクロ流路チップ、マイクロ流体制御、実験系の組成等(界面化学的要素)の3つの要素が最適であることが必要ですので一概には言えませんが、組成・界面化学的要素としては、ドロップレット安定剤である界面活性剤濃度が高いもの(通常2%⇒5%)をご利用いただくと改善できる可能性があります。

Q:ドロップレット(エマルジョン、液滴)を生成する装置やチップはありますか?
A:NTサイエンスでは装置としてドロップレットジェネレーターを提供し、カスタム対応もしておりますのでデバイスを含めたトータルなソリューションにご興味がありましたらお問い合わせください。

 
マイクロドロップレット生成試薬 008-FluoroSurfactant商品カタログ
マイクロドロップレット生成試薬 008-FluoroSurfactant

 
FluoSurf
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関連機器
マイクロハイドロゲル粒子作製の様子

両側から交差する均等な油相の流れによって定量の水相ドロップレット形成が行われます。ドロップレット形成直前に2液混合を行うマイクロ流体チップは、ゲルへの細胞を注入する三次元細胞培養やバイオアッセイ開発にも向いています。

※試験研究用試薬です。官公立、民間を問わず学校、研究所、試験所、検査機関における試験、実験、研究、開発、検査等の用にその全量を供すための試験研究用試薬に該当する場合以外ではご使用いただけません。一部であっても商業的に他の化学物質又は製品の製造の用に供される場合はお取り扱いができません。試験研究を行うのは、自社である場合のほか、エンドユーザー様が試験研究を行う場合も含まれますが、試薬をご使用のエンドユーザー様及び用途確認が必要となります。

 

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    008-Fluorosurfactant採用事例文献例

    • Ackerman, Cheri M et al. “Massively multiplexed nucleic acid detection with Cas13.” Nature vol. 582,7811 (2020): 277-282. doi:10.1038/s41586-020-2279-8
    • Baichman-Kass, Amichai et al. “Competitive interactions between culturable bacteria are highly non-additive.” eLife vol. 12 e83398. 28 Feb. 2023, doi:10.7554/eLife.83398
    • De Jonghe, Joachim et al. “spinDrop: a droplet microfluidic platform to maximise single-cell sequencing information content.” Nature communications vol. 14,1 4788. 8 Aug. 2023, doi:10.1038/s41467-023-40322-w
    • Gérard, Annabelle et al. “High-throughput single-cell activity-based screening and sequencing of antibodies using droplet microfluidics.” Nature biotechnology vol. 38,6 (2020): 715-721. doi:10.1038/s41587-020-0466-7
    • Haller, B., Göpfrich, K., Schröter, M., Janiesch, J.-W., Platzman, I., & Spatz, J. P. (2018). Charge-controlled microfluidic formation of lipid-based single- and multicompartment systems. Lab on a Chip, 18(17), 2665-2674. https://doi.org/10.1039/C8LC00582F
    • Hatori, Makiko N et al. “Dual-layered hydrogels allow complete genome recovery with nucleic acid cytometry.” Biotechnology journal vol. 17,4 (2022): e2100483. doi:10.1002/biot.202100483
    • Hattori, Kazuki et al. “Droplet Array-Based Platform for Parallel Optical Analysis of Dynamic Extracellular Vesicle Secretion from Single Cells.” Analytical chemistry vol. 94,32 (2022): 11209-11215. doi:10.1021/acs.analchem.2c01609
    • Imai, Ryo, and Hideaki Kano. “Label-free enzymatic reaction monitoring in water-in-oil microdroplets using ultra-broadband multiplex coherent anti-Stokes Raman scattering spectroscopy.” Biomedical optics express vol. 13,3 1506-1515. 15 Feb. 2022, doi:10.1364/BOE.449914
    • Jang, Minjeong et al. “Droplet-based microtumor model to assess cell-ECM interactions and drug resistance of gastric cancer cells.” Scientific reports vol. 7 41541. 27 Jan. 2017, doi:10.1038/srep41541
    • Khan, Anowar H et al. “Generation of 3D Spheroids Using a Thiol-Acrylate Hydrogel Scaffold to Study Endocrine Response in ER+ Breast Cancer.” ACS biomaterials science & engineering vol. 8,9 (2022): 3977-3985. doi:10.1021/acsbiomaterials.2c00491
    • Kim, Samuel C et al. “Single-Cell RT-PCR in Microfluidic Droplets with Integrated Chemical Lysis.” Analytical chemistry vol. 90,2 (2018): 1273-1279. doi:10.1021/acs.analchem.7b04050
    • Klein, Allon M et al. “Droplet barcoding for single-cell transcriptomics applied to embryonic stem cells.” Cell vol. 161,5 (2015): 1187-1201. doi:10.1016/j.cell.2015.04.044
    • Lan, Freeman et al. “Single-cell genome sequencing at ultra-high-throughput with microfluidic droplet barcoding.” Nature biotechnology vol. 35,7 (2017): 640-646. doi:10.1038/nbt.3880
    • Laurent, Julie M et al. “Directed evolution of material-producing microorganisms.” Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America vol. 121,31 (2024): e2403585121. doi:10.1073/pnas.2403585121
    • Luo, Siwei et al. “ATLAS-seq: a microfluidic single-cell TCR screen for antigen-reactive TCRs.” Nature communications vol. 16,1 216. 2 Jan. 2025, doi:10.1038/s41467-024-54675-3
    • Malic L, Clime L, Moon BU, Nassif C, Da Fonte D, Brassard D, Lukic L, Geissler M, Morton K, Charlebois D, Veres T. Sample-to-answer centrifugal microfluidic droplet PCR platform for quantitation of viral load. Lab Chip. 2024;24(20):4755-4765. doi:10.1039/D4LC00533C.
    • Potenza, Luca et al. “Passive Droplet Microfluidic Platform for High-Throughput Screening of Microbial Proteolytic Activity.” Analytical chemistry vol. 96,40 (2024): 15931-15940. doi:10.1021/acs.analchem.4c02979
    • Rajan, Saravanan et al. “Recombinant human B cell repertoires enable screening for rare, specific, and natively paired antibodies.” Communications biology vol. 1 5. 22 Jan. 2018, doi:10.1038/s42003-017-0006-2
    • Ribeiro, Ana L J L et al. “Thermostable in vitro transcription-translation compatible with microfluidic droplets.” Microbial cell factories vol. 23,1 169. 10 Jun. 2024, doi:10.1186/s12934-024-02440-y
    • Rutkauskaite, Justina et al. “High-throughput single-cell antibody secretion quantification and enrichment using droplet microfluidics-based FRET assay.” iScience vol. 25,7 104515. 2 Jun. 2022, doi:10.1016/j.isci.2022.104515
    • Samlali K, Alves CL, Jezernik M, Shih SCC. Droplet digital microfluidic system for screening filamentous fungi based on enzymatic activity. Microsyst Nanoeng. 2022;8:123. Published 2022 Nov 21. doi:10.1038/s41378-022-00456-1
    • Samy, Karen E et al. “Human intestinal spheroids cultured using Sacrificial Micromolding as a model system for studying drug transport.” Scientific reports vol. 9,1 9936. 9 Jul. 2019, doi:10.1038/s41598-019-46408-0
    • Schaerli, Yolanda. “Bacterial Microcolonies in Gel Beads for High-throughput Screening.” Bio-protocol vol. 8,13 (2018): e2911. doi:10.21769/BioProtoc.2911
    • Staskiewicz, Klaudia et al. “Droplet microfluidic system for high throughput and passive selection of bacteria producing biosurfactants.” Lab on a chip vol. 24,7 1947-1956. 26 Mar. 2024, doi:10.1039/d3lc00656e
    • Tompkins, Nathan et al. “Testing Turing’s theory of morphogenesis in chemical cells.” Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America vol. 111,12 (2014): 4397-402. doi:10.1073/pnas.1322005111
    • Tu R, Zhang Y, Hua E, et al. Droplet-based microfluidic platform for high-throughput screening of Streptomyces. Commun Biol. 2021;4(1):647. Published 2021 May 31. doi:10.1038/s42003-021-02186-y
    • Zheng, Wenshan et al. “High-throughput, single-microbe genomics with strain resolution, applied to a human gut microbiome.” Science (New York, N.Y.) vol. 376,6597 (2022): eabm1483. doi:10.1126/science.abm1483
    • Vanhoucke T, Perima A, Zolfanelli L, Bruhns P, Broketa M. Deep learning enabled label-free microfluidic droplet classification for single cell functional assays. Front Bioeng Biotechnol. 2024;12:1468738. doi:10.3389/fbioe.2024.1468738.
    • Welch NL, Zhu M, Hua C, et al. Multiplexed CRISPR-based microfluidic platform for clinical testing of respiratory viruses and identification of SARS-CoV-2 variants [published correction appears in Nat Med. 2024 Jan;30(1):307. doi: 10.1038/s41591-023-02684-y.]. Nat Med. 2022;28(5):1083-1094. doi:10.1038/s41591-022-01734-1
    • Wong, Ada Hang-Heng et al. “Drug screening of cancer cell lines and human primary tumors using droplet microfluidics.” Scientific reports vol. 7,1 9109. 22 Aug. 2017, doi:10.1038/s41598-017-08831-z

     

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