シングルセル(1細胞)遺伝子発現解析とは
シングルセル(1細胞)遺伝子発現解析とは、従来の細胞集団として見てきた遺伝子発現解析と異なり、単離した細胞であるシングルセル(1細胞)毎で行う遺伝子発現解析です。
これまでのバルク解析では解明できなかったがん組織における多様な免疫抑制環境などについてシングルセル(1細胞)遺伝子発現解析の導入により明らかになりつつあり、今後のがん治療への応用が期待されています。
Fluidigm C1の発売をきっかけにしてシングルセル解析が一気に普及し、現在では様々ななプラットフォームが誕生しました。それぞれメリット、デメリットがあるので研究課題や予算(装置新規導入コストとランニングコスト)に合わせたベストな手法、プラットフォームを選択する必要があります。各種手法やプラットフォームにより若干の違いはありますが、シングルセル遺伝子発現解析の大まかなプロセスは下記になります。
①細胞/サンプル調製
シングルセル又は単一核のサンプル懸濁液を、組織、血液、生検体、腫瘍、培養細胞、植物片、真菌類(酵母など)、プロトプラストなどから調整します。
②単離/mRNA捕捉(ドロップレット式の場合)
~1万個程度のシングルセル(1細胞)を個々にドロップレットやウェルなどの区画に個別バーコード(識別)配列を持ったビーズやゲルなどのmRNA捕捉粒子とペアでサンプルを単離します。この過程で2個の細胞が同区画内に入る確率(ダブレット率)が高いと後のデータ精度に影響を及ぼします。プラットフォームを選ぶ際は、細胞のダブレット率を比較することが重要になります。また、処理する数量が多い場合はダブレット率も高くなるので比較する際は同じサンプル数でのダブレット率を見る必要があります。
細胞を単離する際は、細胞溶解液をmRNA捕捉粒子と共に加えることで細胞単離後に細胞溶解、mRNA捕捉を区画内で行うことができます。
③逆転写/cDNA合成
バーコード(識別)配列を持ったビーズやハイドロゲルなどの粒子によって捕捉されたmRNAは回収され、逆転写反応によって個別識別配列を持ったcDNAの第1鎖が合成されます。
④PCR/品質チェック/ライブラリー調製
合成されたcDNAを鋳型としてプライマーが結合し、PCRによって増幅されます。PCR産物を回収し、必要に応じてNGS実施前に産物の品質チェックのため電気泳動などを行います。NGS用のキットなどを用いてライブラリー調製を行います。NGSには費用が掛かる為、一定の品質が確保されたサンプルのみを次工程に回した方が良いです。
⑤NGS
イルミナ社のHiSeq 3000、HiSeq 4000、NextSeq、MiSeqなどの次世代シーケンサーによる配列解析を行います。
⑥データ解析
トリミング、マッピング、正規化、可視化/クラスタリングなどのデータ処理を行い、細胞の解析を行います。
参考文献
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